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Protéines
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PCR et qPCR
Conseils de dépannage pour les protocoles de PCR standard, de qPCR en temps réel et de PCR numérique. Couvre la conception des amorces, les conditions de cyclage, la sélection de la polymérase et l'interprétation des résultats.
9 FAQs < Réponse en moins de 2 heuresDr H. Nakamura
Frequently Asked Questions

Les causes les plus fréquentes de l'absence de bande sont :

  • Échec de l'amorce — vérifier la température de fusion (Tm), la teneur en GC (40-60 %) et s'assurer que les amorces ne forment pas de dimères
  • Matrice dégradée — faire migrer la matrice sur gel pour en confirmer l'intégrité ; le rapport A260/A280 doit être de 1,8-2,0
  • Inhibiteurs dans la matrice — la présence d'éthanol, de phénol ou d'EDTA peut bloquer la polymérase
  • Concentration de Mg²⁺ incorrecte — la concentration standard est de 1,5 mM ; titrer entre 1,0 et 3,0 mM
  • Température d'hybridation trop élevée — essayer de la réduire par paliers de 5 °C
Tip: Effectuez un contrôle positif (matrice + amorces fonctionnels connus) parallèlement à chaque nouvelle PCR pour déterminer si le problème vient du réactif ou de la matrice.

Pour la plupart des analyses qPCR, 1 à 10 ng d'ADNc ou d'ADN génomique par réaction de 20 µL sont optimaux. Une surcharge (> 100 ng) provoque une inhibition et des valeurs Cq artificiellement élevées. Une sous-charge (< 0,01 ng) augmente la variabilité inter-réplicats.

Exécutez toujours une courbe standard sur 4 à 5 dilutions log pour vérifier l'efficacité de la réaction (90 à 110 % acceptable). L'efficacité est calculée comme suit : E = (10^(–1/pente)) – 1.

Tip: Normalisez tous les échantillons à la même concentration d'entrée avant de préparer la plaque afin de réduire l'erreur de pipetage en tant que variable.

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Kits ELISA
Conseils sur le revêtement de plaque, le blocage, la dilution des échantillons, l'incubation des anticorps, le développement du signal et l'interprétation des données pour les formats direct, indirect, sandwich et compétitif.
8 questions fréquentes FAQs < Réponse en moins de 2 heures
Frequently Asked Questions

Un signal faible indique généralement l'une des causes suivantes :

  • Péremption du réactif ou dommages dus à la congélation/décongélation — vérifiez les dates de lot ; évitez les congélations/décongélations répétées des anticorps
  • Temps ou température d'incubation insuffisants — assurez-vous que la plaque est à la bonne température et que l'incubation n'est pas interrompue prématurément
  • Substrat non activé — le substrat TMB doit être à température ambiante avant utilisation
  • Concentration de l'échantillon trop faible — assurez-vous que l'échantillon se situe dans la plage de la courbe étalon ; concentrez si nécessaire

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Culture cellulaire
Préparation de milieux, repiquage, prévention de la contamination, cryoconservation et tests de détection de mycoplasmes. Soutien pour les cellules primaires, les lignées cellulaires et les systèmes de culture 3D.
8 FAQ FAQs < Réponse en moins de 2h
Frequently Asked Questions

Le mycoplasme est le contaminant de culture cellulaire le plus répandu et est invisible à l'œil nu ou à la microscopie optique standard. Méthodes de détection :

  • Détection par PCR — la plus sensible ; le kit de détection de mycoplasmes ABMIUM (réf. AB-MYC-01) détecte plus de 90 espèces
  • Coloration DAPI/Hoechst — les mycoplasmes apparaissent comme de petits points fluorescents autour des noyaux

Pour l'élimination, un traitement au BM-Cyclin sur deux cycles de 7 jours est efficace pour la plupart des souches. Confirmer l'élimination 2 semaines après le traitement.

Si la présence de mycoplasmes est confirmée, mettez immédiatement en quarantaine la lignée affectée et décontaminez l'incubateur. Ne continuez jamais à repiquer une lignée positive sans traitement.

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Autres produits
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